冷熱板測試儀是評估動物冷、熱痛覺異常性疼痛和痛覺過敏研究的經典工具，常用于慢性疼痛、神經病理性疼痛等鎮痛藥物研發、篩選和藥效評估實驗中。

在動物疼痛研究中，冷熱板測試一直是嚙齒動物冷、熱痛試驗的金標準。除了*常用的恒溫方法外，研究者越來越偏愛能夠以給定的時間速率將溫度從起始點提高/降低到終點的設備，以區分傷害感受器亞型，從而檢測痛覺過敏和異常性疼痛的差異。

Ugo basile冷熱板測試儀具有溫度變化范圍廣、多階段測試可調等優點，可以靈活地進行從大小鼠痛覺過敏到異常性疼痛的多種疼痛實驗。設備的靜音運行模式可將實驗動物的干擾降到**，保證動物每次的傷害性反應都可在無拘束的自然條件下得出；并可通過U盤將實驗數據導出為CSV文件，方便數據統計與處理。

在主機設置初始溫度和目標溫度后，將大鼠（小鼠）放置在冷熱板上，冷熱板會以穩定的速率進行降溫或加熱，當溫度達到疼痛的敏感性節點時，引起動物傷害性反應（后爪舔舐、退縮或跳躍）。

優勢特點：

1. 三種溫度控制模式，升降溫速率自定義程度高

恒定溫度模式：可控制溫度在設定時間內持續穩定。

線性升降溫模式：可控制單位時間內溫度變化速率恒定。

急速升降溫模式：可控制在*快時間達到目標溫度。

2. 大范圍溫度控制，冷、熱刺激雙模式

具有冷板和熱板兩種工作模式，-5℃至65℃大范圍溫度控制，切換控溫模式方便快捷?？珊w多種動物模型，應用**，在疼痛實驗方案中獲得的數據更**。

3. 可通過軟件編輯多個溫控階段

系統標配X-PAD軟件，用戶可自定義多段升降溫模式，設置動物組別，并通過U盤將其上傳到冷熱板測試儀進行自動控制測試。

4. 具備數字鍵盤和腳踏板，記錄動物反應和刻板行為

標配數字鍵盤和腳踏板，可以預設 10 個按鍵用以記錄疼痛動物的異常反應和刻板行為（如舔、抓、跳、梳理、發聲、直立、靜止、攀爬、顫抖、抽搐）并將結果保存在測試主機中。

應用領域：

冷熱板測試儀**用于研究傷害感受器、溫度感知受體、冷熱異常性疼痛和痛覺過敏的基礎機制研究，以及炎癥與神經理性疼痛疾病中鎮痛藥物（如阿片類藥物）的精確、快速篩選測試，測試化合物抗傷害的藥效，如坐骨神經慢性收縮損傷（CCI）模型。

型號規格：

參考文獻：

1.Orthofer, Michael, et al. "Identification of ALK in Thinness." Cell 181.6 (2020): 1246-1262.doi: 10.1016/j.cell.2020.04.034

2.Trendafilova, Teodora, et al. "Sodium-calcium exchanger-3 regulates pain “wind-up”: From human psychophysics to spinal mechanisms." Neuron 110.16 (2022): 2571-2587.

3.Cao, Chenxi, et al. "Cholesterol-induced LRP3 downregulation promotes cartilage degeneration in osteoarthritis by targeting Syndecan-4." Nature Communications 13.1 (2022): 7139. doi: 10.1038/s41467-022-34830-4

4.Prieto, Martin, et al. "Light activated pulsatile drug delivery for prolonged peripheral nerve block." Biomaterials 283 (2022): 121453. doi: 10.1016/j.biomaterials.2022.121453

5.Hou, Yiwen, et al. "Coordinated activity of a central pathway drives associative opioid analgesic tolerance." Science Advances 9.6 (2023): eabo5627. doi:  

6.Xing, Lei, et al. "Expression of human‐specific ARH***11B in mice leads to neocortex expansion and increased memory flexibility." The EMBO journal 40.13 (2021): e107093.

7.Cetin, Zeynep, et al. "The Role of Hydrogen Sulfide in the Development of Tolerance and Dependence to Morphine in Mice." Neuropsychobiology 80.3 (2021): 264-270. doi: 10.1159/000511541

8.Ford, Neil C., et al. "Role of primary sensory neurone cannabinoid type-1 receptors in pain and the analgesic effects of the peripherally acting agonist CB-13 in mice." British journal of anaesthesia 128.1 (2022): 159-173.doi:10.1016/j.bja.2021.10.020

9.Blomqvist, Kim J., et al. "Systemic hypertonic saline enhances glymphatic spinal cord delivery of lumbar intrathecal morphine." Journal of Controlled Release 344 (2022): 214-224. doi：10.1016/j.jconrel.2022.03.022

10.Gan, Zheng, et al. "Repetitive non-invasive prefrontal stimulation reverses neuropathic pain via neural remodelling in mice." Progress in neurobiology 201 (2021): 102009.